|
|
|
||
|
Praktické cvičení Buněčné organely navazuje na přednášky z Biochemie a Fyziologie buňky. V prostředí laboratoře seznamuje studenty se základními i složitějšími metodami biochemické analýzy živočišných buněk. Cvičení probíhá na různé úrovni organismu, od tkání, přes buňky a buněčné organely, až po izolované proteiny. Účastníci kurzu si prakticky zmapují např. tok elektronů mitochondriálním dýchacím řetězcem, či stanovení kinetických parametrů vybraného enzymu.
Teoretická část kurzu probíhá v zimním semestru a koná se formou turnusu zahrnujícího tři až čtyři přednášky. Ty jsou v současné době rozvrhovány v pátek odpoledne. Turnus bývá pravidelně ke konci zimního semestru, tedy na přelomu listopadu a prosince. Tato část je zakončena zkouškou (písemným testem). Jejím úspěšným absolvováním je podmíněna účast na praktické části kurzu, která se uskuteční ke konci letního semestru. Praktická část je pro každého studenta dvoudenní (absolvuje dvě úlohy). Po vypracování a přijetí protokolu je udělen zápočet. O přesných termínech jak zimní, tak letní části jsou studenti s předstihem informováni. Last update: Šebková Nataša, RNDr., Ph.D. (24.09.2025)
|
|
||
|
Lehninger Principles of Biochemistry, 6th edition 2000, (ISBN 1-57259-153-6) Nelson, D.L., Cox, M.M. Worth Publishers, New York; Lodish et al.: Molecular Cell Biology. 7th ed., 2008 (ISBN 0-7167-7601-7), W.H. Freeman and Company, New York. I. O. Scheffler: Mitochondria, 2nd ed., 2008 (ISBN 978-0-470-04073-7), John Wiley and Sons, Inc
Last update: Kalous Martin, doc. RNDr., CSc. (27.03.2019)
|
|
||
|
Během zkoušky budou ověřovány znalosti z obsahu jednotlivých přednášek. Last update: Šebková Nataša, RNDr., Ph.D. (19.09.2019)
|
|
||
|
Sylabus přednášky Buněčné organely.
1. Struktura a funkce semiautonomních organel a) chloroplasty b) mitochondrie
2. Vybrané metabolické dráhy, produkující energii v eukaryotní buňce a) cyklus kyseliny citronové b) oxidační fosforylace c) mechanismy produkce ATP
3. Základy enzymové kinetiky a) rovnice Michaelise – Mentenové b) metody stanovení Vmax a KM c) typy inhibice enzymově katalyzovaných reakcí
4. Základní laboratorní metody a) homogenizace biologického materiálu b) oddělení buněčných frakcí – diferenciální centrifugace
5. Pokročilé laboratorní metody a) oxygrafie – vysoce přesné měření spotřeby kyslíku mitochondriemi v závislosti na různých substrátech a inhibitorech b) spektrofotometrie – stanovení enzymatických aktivit vybraných enzymů a jejich kinetických parametrů Last update: Kalous Martin, doc. RNDr., CSc. (25.02.2019)
|