The course "Immunology – Practical Course" is limited to 48 students. At the beginning of the course, students will take an entry test to assess whether they have familiarized themselves with the laboratory protocol. Students who demonstrate insufficient knowledge of the protocol may not be admitted to the course.
The aim of the course is to introduce students to fundamental immunological techniques through hands-on laboratory work.
The course is intended for students interested in immunological methods and in further expanding their knowledge of immunology. It is recommended as a complement to the Immunology lecture course.
The course is recommended for second- and third-year undergraduate students who have successfully completed the practical courses in Cell Biology and Histology. The practical course lasts four full days and is held in November and December.
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (20.07.2026)
Míst v předmětu Imumunology - a practical course je 48. Na začátku kurzu proběhne test, který prověří zda se studenti seznámili s protokolem. Studenti, kteří neprokáží dostatečné znalosti protokolu nemusí být do praktika připuštěni.
Cílem cvičení je úvod do základních imunologických metod aktivní prací v laboratorních podmínkách.
Určeno pro zájemce o imunologické metodiky, a dalšímu prohloubení znalostí imunologie. vhodné jako doplněk přednášky z Imunologie.
Doporučený ročník 2. a 3. po absolutoriu praktik z Buněčné biologie a Histologie. Praktikum je čtyřdenní, probíhá v listopadu - prosinci.
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (20.07.2026)
Literature -
Students receive an electronic version of the protocol with instructions and theory at least one week prior to practice.
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (18.03.2019)
K dispozici bude elektronická verze protokolů práce s dalšími instrukcemi
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (18.03.2019)
Course assessment methods and requirements for successful completion, grading scheme -
To obtain the credit,students prepare an electronic report containing the results and interpretation of the experiments and poster summarizing the obtained results.
only credits are awarded for the course
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (21.11.2023)
Podmínkou získání zápočtu je příprava elektronická zprávy obsahující výsledky a interpretaci provedených experimentů, diskuse získaných výsledků a příprava posteru shrnující výsledky získané v praktických cvičeních.
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (18.03.2019)
Syllabus -
1. Introduction of immunologically important organs and tissues at the mouse model, preparation of immune cell populations 2. Culture of these cells, their differentiation and activation 3. Histological staining of dry imprints and smear samples 4. Fluorescent staining and flow cytometry 5. Immunoglobin isolation, protein electrophoresis, western blotting 6. ELISA 7. Indirect immunofluorescence,microscopy 8. NO assay
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (18.03.2019)
1. Seznámení se s imunologicky významnými orgány a tkáněmi na modelu myši, příprava populací buněk imunitního systému (peritoneální makrofágy, splenocyty, T-lymfocyty, buňky kostní dřeně). 2. Kultivace těchto buněk, diferenciace (kostní dřeň pomocí GM-CSF v dendritické buňky), aktivace, stanovení buněčných populací pomocí průtokové cytometrie 3. Příprava imunofluorescenčních preparátů pro mikroskopii 4. Separace proteinů a následná detekce pomocí Western blotingu, ELISA, Dot-blot, barvení stříbrem, izolace IgG pomocí proteinu A, 5. Detekce antigenů fluorescenční mikroskopií, práce s invertovaným fluorescenčním mikroskopem. 6. Genotypizace DNA
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (18.03.2019)
Learning outcomes -
After completing the course, the student will be able to master the following skills:
1. Remember
List and identify immunologically relevant organs and tissues (spleen, thymus, bone marrow, lymph nodes) on a mouse model.
State the principles of the following methods: flow cytometry, ELISA, Western blot, immunofluorescence, and DNA genotyping.
2. Understand
Distinguish individual cell populations based on surface markers used in flow cytometry.
Explain in their own words the principles of antibody isolation and antigen detection using different methodological approaches.
3. Apply
Perform isolation and culture of selected immune system cells.
Measure the distribution of cell populations using flow cytometry.
Prepare an immunofluorescence sample and perform basic work with an inverted fluorescence microscope.
Carry out protein separation and their detection using Western blot, ELISA, or Dot blot methods.
4. Analyze
Analyze data obtained by flow cytometry and interpret differences between cell populations.
Compare the sensitivity and specificity of ELISA, Western blot, and immunofluorescence methods for antigen detection.
Evaluate the quality of protein separation (e.g., silver staining) and identify possible technical errors.
5. Evaluate
Assess the suitability of a selected method for a specific experimental question in immunology.
Critically evaluate and justify the quality of obtained data (e.g., weak signal, nonspecific binding, contamination).
6. Create
Create a poster summarizing the results obtained during the practical classes.
SMART aspect: Assessed through analysis of laboratory protocols, discussion of measurement results, and evaluation of the poster.
Last update: Krulová Magdaléna, doc. RNDr., Ph.D. (07.01.2026)
Student po absolvování předmětu zvládne následující dovednosti:
1. Zapamatovat si a vybavit (Remember)
·Vyjmenuje a identifikuje imunologicky významné orgány a tkáně (slezina, thymus, kostní dřeň, lymfatické uzliny) na modelu myši.
